间标流式细胞术实验方案
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使用一抗和偶联二抗的流式细胞术一般程序。
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间接标记需要两个孵育步骤，首先用一抗孵育，然后再用相应的二抗孵育。二抗（而非一抗）偶联荧光染料（FITC、PE、Cy5® 等）。请注意，该方案仅为通用实验方案，您可能需要根据具体的应用进行调整。
一般程序：
1. 收集并洗涤细胞，然后测定细胞总数。
通常在12 x 75 mm2 大小的聚苯乙烯圆底Falcon离心管中对细胞进行染色。但是，若有合适的离心设备，细胞染色可在任何容器中进行，例如试管、微量离心管和 96 孔圆底微量滴定板。一般说来，应该尽可能地加快离心速度，保证去除上清液时的细胞损失较小，但是如果离心速度过快会导致细胞难以重悬。
通常需要检查细胞活力是否在 95% 左右且不低于 90%。
2. 在含 10% FCS、1% 叠氮化钠的冰冷 PBS 溶液中重悬细胞至约 1-5 x 106 细胞/mL。
请使用冰冷的试剂/溶液，并且将细胞保存在 4 ℃ 的低温环境下，因为低温和叠氮化钠的存在可以抑制表面抗原的调节和内化作用，避免了荧光强度的降低。
3. 向每根离心管中添加 100 μl 细胞悬液。
4. 添加 0.1-10 μg/mL 的一抗。如有必要，应使用 3% BSA/PBS 进行稀释。
5. 在室温下或 4 ℃ 的避光孵育至少 30 分钟。
6. 细胞洗涤 3 次：以 400 g 的速度离心 5 分钟，然后在冰冷的 PBS 中重悬。您可能需要根据所用的细胞类型调节离心条件（离心力和离心时间）。
7. （依照制造商说明书）使用 3% BSA/PBS 将荧光染料标记二抗稀释到最佳浓度，然后在该溶液中对细胞进行重悬。
8. 在 4 ℃ 或室温下孵育至少 20-30 分钟。此孵育步骤必须在黑暗环境中进行。
9. 细胞洗涤 3 次：以 400 g 的速度离心 5 分钟，然后在 含 3% BSA、1% 叠氮化钠的冰冷 PBS 溶液中重悬。
10. 立即将细胞悬液转移至 4 ℃ 的黑暗环境中保存。
11. 分析：为了获得最佳结果，请尽快使用流式细胞仪对细胞进行分析。
我们建议您在当天进行分析。为了延长储存时间（16 小时），同时适应灵活安排使用细胞仪的时间，可使用 1% 多聚甲醛重悬细胞以防止变质。
固定：
如果分析之前的等待时间超过 1 小时，您可能需要在第 5 步后固定细胞。此操作可使细胞保留数天（可以使光散射稳定并使大部分有生物危害的试剂失活）。对照组需要通过相同的程序进行固定。如果细胞需要保持活力，则不应固定。固定细胞的方法有多种。操作人员需要对不同抗原的固定进行调整优化。
1. 每份样品中加入 100 µL 0.01% 至 1% 的多聚甲醛固定 10-15 分钟。
2. 丙酮或甲醇：
N/B 聚苯乙烯//塑料管不适用于丙酮
向每份样品中添加 1 mL 冰冷的丙酮。
轻轻混匀。在 -20 ℃ 下静置 5-10 分钟。
离心，然后用含 1% BSA 的 PBS 洗涤两次。
如果您希望恢复细胞功能，例如要收集细胞进行功能研究，请勿向缓冲液中添加叠氮化钠。这种试剂会抑制代谢活动。