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WB 实验步骤关键点合集

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              abcam 整理了 WB 实验中不容忽视的小细节,并将精华内容制作成了 WB 实验check list,方便您对照这张表来检查每个实验步骤的关键点。您可以点击图片下载 Checklist。



              WB 实验流程通常包括样本制备、电泳、转膜、封闭、抗体孵育和检测 6 个部分。这 6 个部分是环环相扣,每一步的疏忽都可能导致一无所获。


              样本选择和处理

              蛋白分子参与生命活动的各个过程,其功能复杂多样,有些蛋白可能只在部分组织和细胞表达(图1)。有些蛋白可能需要诱导,才能表达或表达量增加(图2)。有些蛋白可能存在翻译后修饰,导致其蛋白分子量大小可能与预测不符(图2,3)。有些蛋白可能有多个异构体或者容易被降解,导致出现多条条带的现象(图2)。因此,只有足够了解您研究的蛋白特性,您才能在样本的选择和处理上得心应手,美美的开启您的 WB 之旅。




              图1 MMP9在不同细胞系表达水平不同。

              Lane 1:LoVo全细胞裂解液;
              Lane 2:Huh7全细胞裂解液;
              Lane 3:MCF7全细胞裂解液;
              Lane 4:HeLa全细胞裂解液;
              Lane 5:Caco-2全细胞裂解液; Lane 6:A549(血清饥饿诱导过夜)全细胞裂解液;
              Lane 7:A549(血清饥饿诱导过夜,80nM TPA处理24小时)全细胞裂解液;
              Lane 8:MDA-MB-231(血清饥饿诱导过夜)全细胞裂解液;
              Lane 9:MDA-MB-231(血清饥饿诱导过夜后,200nM TPA处理24小时)全细胞裂解液;
              Lane 10:HepG2全细胞裂解液。

              图2 在HeLa细胞中HIF-1 alpha蛋白需低氧诱导才表达。

              Lane 1 : 未处理C6 (rat glial tumor glial cell)全细胞裂解液;
              Lane 2 : 400 µM CoCl2和200 µM MG-132 (ab141003)处理4小时后的C6全细胞裂解液。

              预测分子量: 92 kDa;检测到分子量: 110 kDa。

              图3 SQSTM1 / p62蛋白。

              Lane 1:人肝脏裂解液;
              Lane 2:人肾脏裂解液;

              预测分子量: 47 kDa;检测到分子量: 62 kDa。

              样本制备

              样本制备是 WB 实验的开端,裂解液的选择、样本的破碎方法、温度和变性等都会影响样本制备是否成功。

              以下是一些样本制备过程中需关注的小细节:

              • 添加复合蛋白酶抑制剂以避免靶标蛋白降解。如果涉及蛋白修饰的检测,需添加相应的去修饰酶抑制剂,例如对于磷酸化修饰蛋白添加复合磷酸酶抑制剂,以防止蛋白在提取时被去磷酸化。
              • 选择合适的裂解液来富集更多靶标蛋白。
              • 超声破碎处理细胞以富集更多靶标蛋白。​

              超声处理富集THP-1细胞中的Histone H3蛋白。

              Lane 1:超声处理THP1全细胞裂解液;

              Lane 2:未处理THP-1全细胞裂解液。

              • 整个样本制备过程中,保持样本置于冰上。
              • 一般来说,蛋 95℃变性5-10min。对于有些多次跨膜蛋白,37℃或者70℃ 10min可能效果更好。
              • 通过Bradford分析、Lowry分析或BCA分析测定样本蛋白浓度。

              电泳

              电泳可以将靶标蛋白与其它蛋白分开,更易检测。不同浓度的分离胶对不同分子量的的蛋白分离效果是不同的。蛋白的上样量,也会影响是否可以检测到有效信号或者获得漂亮的图片。设置阳性和阴性对照不仅有助于分析蛋白功能,在WB实验失败时也有助于分析失败的原因。

              在电泳时需要特别关注以下小细节:

              • 根据蛋白大小选择合适的电泳胶浓度,以确保不同蛋白的迁移速率与分离程度最优。具体可参考表1。
              • 表1 不同浓度的分离胶选择

              蛋白的分子量大小

              分离凝胶丙烯酰胺百分比

              4–40 kDa

              20%

              12–45 kDa

              15%

              10–70 kDa

              12.5%

              15–100 kDa

              10%

              25–200 kDa

              8%

              • 对于分子量较小的靶标蛋白(如分子量<25 kDa),请使用较高浓度的分离胶进行电泳。
              • 对于分子量较大的靶标蛋白(如分子量>100 kDa),请使用较低浓度的分离胶进行电泳。
              • 至少上样20μg总蛋白进行电泳。
              • 建议使用阳性和阴性对照。

              转膜

              转膜是指将蛋白从电泳胶上转移到膜上,方便目标蛋白的检测。转膜缓冲液中SDS和甲醇含量对不同分子量蛋白的转膜影响是不同的。PVDF膜孔径的选择依赖于蛋白分子量大小。转膜结束后,丽春红染色使蛋白可视化,方便判断转膜是否成功。


              甲醇浓度对转膜效率的影响。HeLa全细胞裂解液中DNA PKcs蛋白检测。

              Lane 1: 转膜缓冲液中甲醇浓度10%;

              Lane 2: 转膜缓冲液中甲醇浓度20%。


              丽春红染色判断转膜是否成功。左图:转膜成功;右图:转膜失败。

              在转膜时需要特别关注以下小细节:

              • 对于分子量较大的靶标蛋白,建议在转膜缓冲液中加入SDS至终浓度为0.1%。
              • 对于分子量较大的靶标蛋白,建议使用0.45μm的PVDF膜。
              • 对于分子量较小的靶标蛋白,建议使用0.22μm的PVDF膜。
              • 对于分子量较大的靶标蛋白,建议转膜缓冲液中使用10%甲醇或更低浓度。
              • 对于分子量较小的靶标蛋白,建议转膜缓冲液中使用20%甲醇。
              • PVDF膜激活完成后充分清洗,完全去除膜上残留甲醇。
              • 转膜开始前请确认胶与膜之间没有任何气泡。
              • 建议转膜完成后使用丽春红染色,确定转膜是否成功(如果选择荧光标记检测,请确保丽春红完全清洗干净)。

              封闭

              封闭是使未有蛋白吸附的区域被封闭,以防止抗体的非特异性结合,从而降低背景,提高检测灵敏度。常用的封闭液有5%脱脂奶粉和5% BSA或特定封闭液。

              在封闭时需要特别关注以下小细节:

              • 没有适用于所有体系的封闭液,请选择合适的封闭液。