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WB 实验流程通常包括样本制备、电泳、转膜、封闭、抗体孵育和检测 6 个部分。这 6 个部分是环环相扣,每一步的疏忽都可能导致一无所获。
蛋白分子参与生命活动的各个过程,其功能复杂多样,有些蛋白可能只在部分组织和细胞表达(图1)。有些蛋白可能需要诱导,才能表达或表达量增加(图2)。有些蛋白可能存在翻译后修饰,导致其蛋白分子量大小可能与预测不符(图2,3)。有些蛋白可能有多个异构体或者容易被降解,导致出现多条条带的现象(图2)。因此,只有足够了解您研究的蛋白特性,您才能在样本的选择和处理上得心应手,美美的开启您的 WB 之旅。
图1 MMP9在不同细胞系表达水平不同。 Lane 1:LoVo全细胞裂解液; | 图2 在HeLa细胞中HIF-1 alpha蛋白需低氧诱导才表达。 Lane 1 : 未处理C6 (rat glial tumor glial cell)全细胞裂解液; 预测分子量: 92 kDa;检测到分子量: 110 kDa。 | 图3 SQSTM1 / p62蛋白。 Lane 1:人肝脏裂解液; 预测分子量: 47 kDa;检测到分子量: 62 kDa。 |
样本制备是 WB 实验的开端,裂解液的选择、样本的破碎方法、温度和变性等都会影响样本制备是否成功。
以下是一些样本制备过程中需关注的小细节:
超声处理富集THP-1细胞中的Histone H3蛋白。 Lane 1:超声处理THP1全细胞裂解液; Lane 2:未处理THP-1全细胞裂解液。 |
电泳可以将靶标蛋白与其它蛋白分开,更易检测。不同浓度的分离胶对不同分子量的的蛋白分离效果是不同的。蛋白的上样量,也会影响是否可以检测到有效信号或者获得漂亮的图片。设置阳性和阴性对照不仅有助于分析蛋白功能,在WB实验失败时也有助于分析失败的原因。
在电泳时需要特别关注以下小细节:
蛋白的分子量大小 | 分离凝胶丙烯酰胺百分比 |
4–40 kDa | 20% |
12–45 kDa | 15% |
10–70 kDa | 12.5% |
15–100 kDa | 10% |
25–200 kDa | 8% |
转膜是指将蛋白从电泳胶上转移到膜上,方便目标蛋白的检测。转膜缓冲液中SDS和甲醇含量对不同分子量蛋白的转膜影响是不同的。PVDF膜孔径的选择依赖于蛋白分子量大小。转膜结束后,丽春红染色使蛋白可视化,方便判断转膜是否成功。
甲醇浓度对转膜效率的影响。HeLa全细胞裂解液中DNA PKcs蛋白检测。 Lane 1: 转膜缓冲液中甲醇浓度10%; Lane 2: 转膜缓冲液中甲醇浓度20%。 |
丽春红染色判断转膜是否成功。左图:转膜成功;右图:转膜失败。 |
在转膜时需要特别关注以下小细节:
封闭是使未有蛋白吸附的区域被封闭,以防止抗体的非特异性结合,从而降低背景,提高检测灵敏度。常用的封闭液有5%脱脂奶粉和5% BSA或特定封闭液。
在封闭时需要特别关注以下小细节: